Auxine
(solution): Préparer d'abord le solvant ( solution à 2% de saccharose).
Peser 10 mg d'auxine et mélanger à 10 ml de solvant. Pour faciliter la dissolution,
faire chauffer légèrement. Cette solution servira de solution mère.
Bleu
de Bromothymol: Dissoudre 0.5 g de bleu de Bromothymol dans 100 ml d'ethanol à
95 °. Ajuster ensuite à 500ml avec de l'eau distillée. (de couleur verte à PH7, il vire au jaune pour un PH < à 6 et au bleu pour
un PH > à 7.7)
Bleu de méthylène: Dissoudre 1 g de bleu de
méthylène dans 1 litre d'eau distillée et bien mélanger (colorant du noyau et d'autres
structures oxydantes)
Bleu de méthylène phéniqué: Dissoudre 2 g de bleu
de méthylène et 20 g de phénol dans 100 ml d'alcool à 95% (colorant utilisé pour
coloration simple des bactéries)
Britton-Robinson : 13 ml d'acide phosphorique à 1 mol.L-1 + 13 ml d'acide ethanoïque à 1mol-L-1 + 130 ml d'acide borique à 0.1 mol-L-1. Compléter à 1 litre et homogénéïser
Carmin
acétique: Dissoudre 0.5 g de carmin 40 pour histologie dans un mélange
de 55ml d'eau distillée et 45 ml d'acide acétique. Porter le tout à ébullition et
laisser bouillir 1 à 2 minutes. Laisser refroidir puis filtrer. Se conserve bien à
température ambiante. ( colore à chaud les chromosomes des cellules de racines de
liliacées et à froid les chromosomes des cellules des parois de glandes salivaires de
chironomes)
Carmin
aluné: Dissoudre 1 g de carmin 40 pour histologie et 4 g d'alun de potassium
dans 100ml d'eau distillée. Faire bouillir très doucement pendant 1/4 d'heure, laisser
refroidir et filtrer. Ajouter quelques gouttes de formol pour éviter le développement
des moisissures. (colorant de la cellulose)
Carmin
vert d'iode (ou carmino vert de Mirande): Dissoudre 6 g de carmin 40 pour
histologie et 12 g d'alun de potassium dans 200 ml d'eau distillée. Chauffer à feu doux,
ajouter 200ml d'eau distillée et 0.4 g de vert d'iode. Porter à ébullition puis laisser
refroidir et filtrer. (double coloration des tissus végétaux; en rose les tissus
cellulosiques et en vert les tissus lignifiés)
Chlorure
d'étain: Dissoudre 20 g de chlorure d'étain dans 200 ml d'eau distillée
chaude et ajouter quelques gouttes d'acide chlorhydrique du commerce. Filtrer. A conserver
à l'abri de la lumière.
Chlorure d'hydrogène: La méthode
la plus simple consiste à faire bouillir de l'acide chlorhydrique du commerce dans un
ballon sur lequel on aura rajouté un dispositif (tube coudé) afin de recueillir le gaz
dans un autre contenant. Dans un ballon de 250 ml, ajouter environ 25 ml d'acide et faire
bouillir à l'aide d'un chauffe ballon. Le gaz est à peine visible. Travailler sous la hotte.
Diiode
à 0.05 mol.L-1 : I2 est peu soluble dans l'eau. Il est
soluble dans une solution d'iodure. Pour 0.05 mol.L-1 de diiode on
prendra 0.15 mol.L-1 de iodure de potassium (1 fois et demi de +). Pour
faire 1 litre de cette solution, peser 12.69 g d'I2 et 24.9 g de KI. Dissoudre
KI dans un minimum d'eau (dans la fiole de 1000ml) ajouter I2 et dissoudre puis
compléter à 1000ml.
DNPH
( 2-4 dinitrophenylhydrazine) : 0.2 g pour 100 ml d'HCl à 2 mol.L-1
Dioxyde
de soufre: Pour une solution à 0.05 mol.L-1, dissoudre 6.3 g de
sulfite de sodium dans 50 ml d'eau distillée puis ajouter 100 ml d'acide sulfurique à 1
mol.L-1. Etendre à 1 litre d'eau distillée. Pour une solution à 0.075 mol.L-1,
dissoudre 9.45 g de sulfite de sodium dans 50 ml d'eau distillée puis ajouter 100 ml
d'acide sulfurique à 1 mol.L-1. Etendre à 1 litre d'eau distillée.
Eau
de mer: 30g de chlorure de sodium + 0.9g de chlorure de potassium + 1.9g de
chlorure de calcium + 4.19g de Mg SO4 pour un litre
Eau
oxygénée à 0.1.L-1: H2 O2 à 10 Vol = 0.89 mol.L-1(si
volume molaire est de 22,4). Pour 100ml d'H2 O2 à 0.1 mol.L-1, on prélève
11.23 ml d'H2O2 à 10 vol que l'on ajuste avec de l'eau
distillée. V1= (C2 x V2) / C1 V1= (0.1 x 100) / 0.89 = 11.23 ml
Eau
iodée (lugol): Dissoudre 20g d'iodure de potassium dans un peu d'eau
distillée puis ajouter 10g d'iode bisublimé. Compléter à 1000 ml d'eau distillée
(ajouter éventuellement un peu d'iode pour permettre la dissolution totale de l'iode).
Conserver dans une bouteille en verre brun. S'utilise dilué et se décolore à la longue.
(l'amidon se colore en bleu, le glycogène en acajou + ou - foncé en fonction de la
concentration)
EDTA
(acide): Il se dissout dans la soude. Pour faire 100ml à 0.1mol.L-1
dissoudre dans environ 50 ml de soude 1mol.L-1 puis compléter à 100ml d'eau
distillée.
Electrolyte pour sonde oxymétrique: 1.5g de tri
sodium phosphate (Na3PO4) pour 30 ml d'eau distillée.
Empois
d'amidon: Faire bouillir 80 ml d'eau distillée. Dissoudre 1 g de poudre
d'amidon dans 10 ml d'eau distillée. Agiter (lait d'amidon). Verser cette suspension dans
l'eau bouillante puis agiter. Poursuivre l'ébullition 1 à 2 minutes. La solution doit
rester translucide et non blanche. Cette solution peut se conserver au réfrigérateur
pendant plusieurs semaines.
Hélianthine:
Dissoudre 0.2 g d'hélianthine dans 1000 ml d'eau distillée chaude. Laisser refroidir et
filtrer. (de couleur orangé, vire au rose pour un PH < à 3.2 et au jaune pour un
PH > à 4.5 )
Liquide
de Knop complet: 1 L d'eau distillée; 1g de nitrate de calcium; 0.25 g de
nitrate de potassium; 0.25 g de sulfate de magnésium; 0.25 g de phosphate monopotassique
ou dihydrogénophosphate; 0.001 g de sulfate ferrique.
Liquide
de Knop sans phosphate: 1 L d'eau distillée; 1 g de nitrate de calcium; 0.5
g de nitrate de potassium; 0.25 g de sulfate de magnésium; 0.1 g de sulfate ferrique ou
fer (III) sulfate
Liquide
de Knop sans potassium: 1L d'eau distillée; 1.25 g de nitrate de calcium;
0.25 g de sulfate de magnésium; 0.25 g de sulfate ferrique.
Liquide
de Knop sans azote: 1L d'eau distillée; 1 g de chlorure de calcium; 0.25 g
de phosphate monopotassique: 0.1 g de sulfate ferrique; 0.5 g de chlorure de potassium;
0.25 g de sulfate de magnésium.
Nitrate
d'argent (mise en évidence des chlorures): Dissoudre 5 g de nitrate d'argent
dans 100 ml d'eau distillée (ou eau déminéralisée). Conserver à l'abri de la lumière
(flacon opaque)
Nitrate
d'argent ammoniacal (réactif de tollens) Prendre une solution de nitrate
d'argent(ex 0.025 mol.L-1) puis ajouter petit à petit de l'ammoniaque dilué(ex: 2
mol.L-1). Un précipité se forme. Continuer de rajouter de l'ammoniaque jusqu'à
dissolution du précipité. Ne pas secouer. Ne se conserve pas. A préparer au dernier
moment.
Permanganate de potassium acidifié: pour 10ml de
permanganate de potassium à 0.1 mol.L-1 ajouter 50 ml d'H2 SO4
à 1 mol.L-1 puis compléter à 1 L
Phénolphtaléïne:
Dissoudre 1 g de phénolphtaléïne dans 100 ml d'alcool à 95 %
Ponts
salins: Pour 100 ml d'eau distillée,20g de nitrate d'ammonium et 3 g d'agar-
Agar. Faire chauffer doucement jusqu'a épaississement léger en remuant la préparation
et laisser refroidir jusqu'à obtenir une consistance plus importante. Couler cette
préparation dans les tubes en U qui serviront de ponts.
Phénylhydrazine
(réactif à la...): 10 ml de phénylhydrazine + 10 ml d'acide acétique à 80%. Agiter.
Compléter à 100ml avec de l'eau distillée. Agiter fortement.
Rouge
de Crésol:0.084 g de bicarbonate de sodium ou hydrogénocarbonate de
sodium; 7.46 g de chlorure de potassium; 0.01 g de rouge de Crésol; 1 L d'eau distillée.
Prendre de l'eau distillée du commerce ou bien la dégazer après distillation en la
faisant bouillir. Ajouter les produits pesés. De couleur rouge, il vire au jaune
pour un PH < à 7.4 et au pourpre pour pour un PH supérieur à 9.
Rouge
de Phénol: Dissoudre 0.1 g de rouge de Phénol dans 100ml d'eau distillée.
De couleur rouge, il vire au jaune pour un PH < à 6,2 et au rouge pourpre pour un PH
> à 8
Rouge
neutre: Dissoudre 1 g de rouge neutre dans 1000 ml d'eau à PH 7 (eau de
Volvic). Le rouge neutre en solution ne se conserve pas longtemps et doit donc être
préparé peu de temps à l'avance. De couleur rouge, il vire au jaune pour un PH > à
8(colorant de la vacuole, s'utilise sur toutes les cellules végétales)
Rouge
Soudan:Dissoudre 1 g de rouge soudan dans 100ml d'alcool à 70 %. Laisser
décanter puis filtrer. (Colore les inclusions lipidiques par transfert; s'utilise sur le
lait, les coupes de graines à réserves lipidiques)
Tampon
4.65: 2.85 cm3 d'acide acétique (acide éthanoïque) + 4.19 g d'acétate de
sodium (éthanoate de sodium). Diluer dans1 litre d'eau distillée.
Tampon
7: 22.4 g de dihydrogénophosphate de potassium + 25.8 g de
dihydrogénophosphate de sodium. Diluer dans 1 litre d'eau distillée.
Tampon
9.22: 10 g de tétraborate de sodium anhydre à diluer dans 1 litre d'eau
distillée
Tampon
10:Dans une éprouvette de 500 ml, mettre 362 ml d'ammoniaque à 22 °
beaumé. Ajouter 35 g de chlorure d'ammonium et compléter à 500 ml
Tampon phosphate : 9.46 g de sodium
hydrogénophosphate( ou disodium hydrogenophosphate dodecahydré ou sodium phosphate
dibasique ou sodium phosphate disodique= Na2HPO4 12H2O)
dans 1L d'eau distillée. 9.06 g de potassium phosphate monopotassique (ou potassium
dihydrogenophosphate ou potassium phosphate monobasique= KH2PO4)dans
1 L d'eau distillée. Prendre 1 grand Becher (1 L). Verser environ 1 L de la solution de
potassium phosphate. Mettre le Becher sur un agitateur magnétique. Utiliser un PH mètre
précis.Le PH doit être proche de 4.5. Ajouter goutte à goutte la solution de sodium
hydrogénophosphate jusqu'à l'obtention du PH désiré (de 5.3 à 8).
Transparisation (solution de...pour
électrophorèse): Mélanger 20 ml d'acide acétique à 80%, 75 ml de méthanol et 5 ml de
diacetonalcool.
Vert
d'iode: Dissoudre 1 g de vert d'iode dans 100 ml d'eau distillée. (colorant
de la lignine, du suber et de la cutine)
Vert
de méthyle acétique: Dissoudre 1 g de vert de Méthyle dans un mélange
de 55 ml d'eau distillée et 45 ml d'acide acétique. (colore l'ADN en vert; colore les
chromosomes des cellules des parois de glandes salivaires de chironomes)
Solution
Zéro: Solution saturée de sulfite de sodium pur anhydre. A préparer en
petite quantité dans une bouteille de faible contenance avec le minimum d'air.
Solution de base pour sonde CO2: 0,2g
d'hydrogenocarbonate de sodium pour 1 litre d'eau distillée (cette solution doit être
mélangée avec la solution d' acide citrique livrée avec la sonde )
Solution de calibrage pour sonde CO2: 25
ml de la solution de base (voir ci-dessus) + 3 ml de la solution acide livrée avec la
sonde
Biuret (réactif
du biuret): Préparer 1000ml d'un solution de soude à 0,2 mol. Peser 3g de sulfate de
cuivre et 9g de tartrate de sodium-potassium. Dissoudre dans 500 ml de la solution de
soude puis rajouter 5g d'iodure de potassium et compléter par les 500 ml de soude
restante. A l'aide d'un agitateur magnétique dissoudre totalement le dépôt qui s'est
formé.
Tampon phosphate saccharose : Pour 250ml de solution, 17.95 g de disodium
hydrogenophosphate + 3.4 g de potassium dihydrogenophosphate + 42.75 g de saccharose +
1.475 de chlorure de potassium. Le PH doit être de 6.5 .
Amylase
bactérienne: 1 pointe d'aiguille lanceolée dans 10 ml d'eau distilée
Pollen:
Environ 1 tête d'étamine diluée dans une goutte d'eau glycérinée (eau + glycérine au
pif ). Pour l'observation l'élève colore à la fushine
Rouge de méthyle : Dissoudre 20 mg de rouge de méthyle
dans 100 mL d’eau distillée chaude. Laisser refroidir et filtrer. Cet indicateur qui
n’est pas sensible à l’acide carbonique, est particulièrement indiqué pour le
dosage de l’ammoniaque.
